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染色質免疫沉淀技術（Chromatin Immunoprecipitation，簡稱ChIP）是研究活體內蛋白質與DNA相互作用的一種技術。它利用抗原抗體反應的特異性，可以真實地反映體內蛋白因子與基因組DNA結合的狀況。隨著對基因功能研究的不斷深入，這項技術正越來越多的被應用于科研的各個領域。
ChIP的原理
把生理狀態下的細胞內的DNA與蛋白質交聯在一起，通過超聲或酶處理將染色質切為小片段后，利用抗原抗體的特異性識別反應，將與目的蛋白相結合的DNA片段沉淀下來，然后可進行后續的DNA序列測序鑒定等。
ChIP實驗步驟
ChIP經驗分享
ChIP實驗操作性很強，下面總結了一些ChIP實驗中您可能會遇到的棘手的問題，下面我們就一起來分享一下吧！
細胞固定
1、甲醛終濃度為1%較適宜；
2、固定時間一般為5-60min較好，具體時間根據實驗而定。；
染色質斷裂
1、 超聲時斷時續，保證低溫；
2、 注意探頭位置，防止產生泡沫；
3、 研究組蛋白需使用酶處理；
染色質免疫沉淀
1、 有Input對照，Input對照不僅可以驗證染色質斷裂的效果，還可以根據Input中
的靶序列的含量以及染色質沉淀中的靶序列的含量，按照取樣比例換算出ChIP的效率，所以Input對照是ChIP實驗*的步驟。
2、 抗體的選擇是關鍵。抗體的選擇要注意三點：一是應該選擇能夠做ChIP實驗的抗體。
盡量選擇ChIP級別商業化的抗體。如沒有，一般可以重組到帶有標簽的載體上，再轉染相應的宿主（目前市面上商業化的chip抗體只有300多種，因此正好找到對應抗體較困難，可以選擇標簽抗體）。二是抗體的結合位點。選擇單抗的話，盡量遠離抗原和染色質相結合的位點，這樣可以大限度保證抗體和抗原的結合，而多抗可識別多個表位，可基本避免該風險。因此單多抗各有優缺點，應重點關注該抗體是否經過ChIP驗證。三是抗體的濃度。抗體濃度的也很重要，濃度太低，不能與靶蛋白*結合。濃度太高會導致非特異性條帶增加背景。
3、 陰性對照可以使用血清或lgG，陽性對照一般使用RNA Polymerase II或者組蛋白。
陰性對照：用實驗抗體同型的IgG作為抗體，理論上不會ChIP下來任何DNA片段，因此作為陰性對照，但是由于非特異結合，或者實驗過程中，沒發生結合的DNA清除不*，可能也會出現條帶。如果陰性對照樣品中的產物量等于特異靶標樣品中產物量，說明特異靶標抗體未發揮作用或者染色質斷裂不充分。
陽性對照：為了保證陽性對照有效，一般選擇陽性對照的引物是根據管家基因設計的。一般用RNA Polymerase II或者Histone H3（組蛋白）抗體，因為RNA Polymerase II是通用轉錄因子，在所有細胞中都能結合基因的核心啟動子區。因此，理論上ChIP后PCR都會有條帶。
4、 需設計已經確定的、不與特異抗原相結合的DNA片段的引物，用來排除抗原和染色質的
非特異結合。
交聯反應的逆轉
1、 RNA酶、蛋白酶需65℃保溫6小時
2、 不加蛋白酶可以提取、分析結合蛋白
DNA的純化
推薦用試劑盒，便于后面的PCR檢測
DNA的鑒定
可以進行二代測序或者QPCR檢測結果
因為ChIP實驗涉及的步驟多，結果的重復性較低，所以對ChIP實驗過程的每一步都應設計相應的對照，而且對結果的分析也需要有一定的經驗。
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